之前的文章中星博士给大家介绍了有关Western Blot实验的原理及实验操作过程中一些需要注意的细节等相关知识。但是依旧有小伙伴在结果图片出来之后满面愁容,实验结果还是不够理想,为了让小伙伴们在得到结果之后有的放矢,接下来,星博士将带领大家对WB实验结果中的一些常见问题进行分析,给大家提出对应的解决方案供大家选择,帮助大家逐一击破难题,为大家得到理想的WB实验结果保驾护航!
"Western Blot实验的步骤很简单,但是也会出现许多问题,导致意想不到的结果。星博士对这些结果进行了汇总,总结出以下五大结果问题:"
(1)非特异性条带或异常条带,
(2)无条带,
(3)背景高,
(4)出现空泡或斑点等,
(5)条带变形。
那么接下来,针对这五大问题,星博士将给大家进行一一分析,提供解决方案,供大家参考!
WB实验结果中常见问题及对策
(1)非特异性条带或异常条带
原因分析 |
推荐解决方案 |
一抗的非特异性结合 |
更换一抗 |
蛋白样品发生降解,蛋白酶将蛋白样品分解成若干小蛋白,降解后的蛋白同样可以被一抗识别 |
样品处理过程中,添加酶抑制剂 |
目的蛋白有多个修饰位点可与一抗结合 |
更换一抗 |
目的蛋白本身存在修饰或者剪切,导致条带异常 |
查找文献,确定蛋白性质 |
(2)无条带
原因分析 |
推荐解决方案 |
样品处理中蛋白发生降解 |
添加酶抑制剂 |
蛋白本身表达丰度很低 |
加大上样量,或提高蛋白浓度 |
转膜时间太短或者太长 |
选择合适的转膜时间 |
一抗的特异性不好,不能识别目的蛋白 |
更换品质更好地一抗 |
洗脱时将目的蛋白洗掉 |
选择合适的吐温浓度,控制洗脱时间 |
原因分析 |
推荐解决方案 |
抗体浓度太高 |
降低抗体浓度,选择合适浓度的抗体 |
洗膜时间或次数不够,清洗不干净 |
延长洗膜时间,增加洗膜次数 |
封闭时间不够 |
建议37度封闭1h以上,4度过夜 |
封闭液选择不当 |
根据蛋白需求选择合适的封闭液 |
封闭液用量不足,没有覆盖整张膜 |
加大封闭液的量,保证整张膜覆盖 |
抗体孵育温度过高 |
建议4度过夜孵育 |
原因分析 |
推荐解决方案 |
出现空泡:转膜过程中,胶与膜中间有气泡产生 |
在制作‘三明治’结构时,尽量赶走气泡,避免气泡产生。夹层之间填充合适厚度的滤纸,保证结构稳定紧实 |
出现黑斑黑点:封闭液溶解不完全,且未经过滤,导致封闭液中有固体块 |
配制封闭液后,充分搅拌混匀,过滤后使用 |
(5)条带变形
条带牵手
原因分析 |
推荐解决方案 |
上样量太大,导致蛋白积压 |
降低上样量 |
分离胶浓度太小,小蛋白弥散 |
提高分离胶浓度 |
条带拖尾
原因分析 |
推荐解决方案 |
样品溶解效果不佳 |
样本裂解后离心 |
分离胶浓度过大 |
降低分离胶浓度 |
条带“微笑”
原因分析 |
推荐解决方案 |
中间部分胶凝固不均匀 |
待充分凝固后在做后续实验 |
电泳温度过高(改变了pH值和迁移速率) |
降低电泳温度(冷库或冰上) |
迁移过快 |
降低迁移速率 |
条带“哑铃型”
原因分析
推荐解决方案
转膜的时候三明治夹得太紧了,把胶夹扁了
适当降低滤纸张数
胶凝固不均一
使用高品质的胶进行实验
样品中杂质太多,杂质沉淀在孔中间
对样品进行离心处理,取上清
Tel:400-6947-688
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